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022-66387942以下是 Polyplus jetPRIME® 转染试剂 的标准操作步骤(适用于贴壁细胞),操作前请确认细胞状态、核酸纯度及实验条件适配性。
一、试剂准备
试剂名称 | 要求 |
jetPRIME® | 使用前平衡至室温,轻涡旋混匀(勿剧烈震荡) |
核酸(DNA/siRNA) | 高纯度(OD<sub>260/280</sub>≈1.8-2.0),无菌无内毒素,溶于无菌水或TE缓冲液 |
jetPRIME® Buffer | 提供无菌缓冲液(若试剂盒内含) |
细胞培养基 | 含血清 & 抗生素(转染全程无需更换无血清培养基) |
二、 Polyplus jetPRIME® 转染试剂操作流程(24孔板为例)
Day 0: 细胞铺板
1. 细胞计数:消化对数生长期细胞,调整密度。
2. 铺板:
- 每孔加入 0.5~1×10? cells(贴壁细胞)
- 用 500μL wan-quan培养基(含10%血清+抗生素)培养。
- 关键:转染时细胞密度需达 70~90% 汇合度(过度生长降低效率)。
Day 1: 转染(耗时<15分钟)
> ?? 所有步骤在无菌环境(超净台)操作,试剂室温平衡。
步骤 | 操作 |
1. 稀释核酸 | 取 1μg DNA(或 1.5~5nM siRNA)加入 200μL jetPRIME Buffer 中,轻混匀(如无Buffer可用无菌Opti-MEM替代)。 |
2. 加转染试剂 | 向稀释核酸中加入 2μL jetPRIME®(DNA:jetPRIME = 1μg:2μL)。 |
3. 混合孵育 | 立即涡旋10秒 → 室温静置10分钟(溶液变浑浊属正常现象)。 |
4. 加入细胞 | 将混合液 逐滴加入细胞孔,轻摇培养板混匀。 |
5. 继续培养 | 放回37℃ CO<sub>2</sub>培养箱,无需更换培养基。 |
三、关键优化参数
变量 | 推荐条件 | 调整建议 |
细胞密度 | 70~90% 汇合度 | 过密→降低效率;过低→细胞毒性↑ |
DNA:jetPRIME比例 | 1μg DNA : 2μL 试剂(24孔板标准) | 按比例放大/缩?。ㄈ?/span>6孔板用4μg DNA+8μL试剂) |
siRNA用量 | 终浓度 10~50nM(参考细胞类型) | 敏感细胞从低浓度(10nM)起始测试 |
孵育时间 | 转染后 24~72小时 检测表达(峰值通常48h) | 荧光蛋白观察24h,功能实验需48~72h |
四、悬浮细胞转染步骤
若转染悬浮细胞(如Jurkat、THP-1):
1. 离心收集细胞 → 重悬于 新鲜培养基(密度 0.5~1×10? cells/mL)。
2. 按 1mL细胞悬液 + 混合液(1μg DNA + 2μL jetPRIME) 加入EP管。
3. 轻柔混匀 → 37℃静置 15~30分钟 → 转移至培养板继续培养。
五、 Polyplus jetPRIME® 转染试剂使用注意事项
1. 细胞状态:仅用健康、低传代细胞(传代<30)。
2. 试剂保存:jetPRIME® 4℃避光保存(非-20℃),保质期内稳定。
3. 避免污染:核酸和Buffer严格无菌操作。
4. 毒性处理:若细胞死亡率高:
- ↓ 降低jetPRIME用量(如1μg DNA用1.5μL试剂)
- ↓ 缩短转染后培养时间(24h后换液)。
5. 对照设置:必设 空载体对照组 + 未转染组。
六、Polyplus jetPRIME® 转染试剂替代方案(特殊情况)
场景 | 替代方案 |
高难度细胞(原代、神经元) | 改用 jetOPTIMUS® |
体内转染 | 搭配 in vivo-jetPEI® |
大片段DNA(>15kb) | 测试 jetPEI® |
问题排查:若效率低 → 检查核酸纯度、细胞密度、试剂比例;或联系 polyplus代理——天津益元利康生物科技有限公司获取技术支持。
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